Размер:
A A A
Цвет: C C C
Изображения Вкл. Выкл.
Обычная версия сайта

Преподаватели и сотрудники

Мажуга Александр Георгиевич

Мажуга Александр Георгиевич

Занимаемые должности

Ректор (Ректорат)

Телефон

(499) 978-87-33

E-mail

rector@muctr.ru

Учёная степень

Доктор химических наук

Учёное звание Профессор РАН

Область научных интересов: синтез наногибридных функциональных материалов, биоорганическая химия, медицинская химия, нанохимия, развитие новых подходов к синтезу и исследованию биологически активных веществ.

Научная деятельность А. Г. Мажуги сосредоточена в области синтеза материалов медицинского назначения. Александром Георгиевичем Мажугой были найдены синтетические подходы к биологически активным соединениям на основе гетероциклических производных, полипептидов, координационных соединений переходных металлов. Исследования А. Г. Мажуги в МГУ имени М. В.Ломоносова посвящены поиску новых противоопухолевых препаратов. Были найдены низкомолекулярные ингибиторы фермента теломераза, среди описанных аналогов данные препараты обладают высокой эффективностью in vitro и in vivo. В рамках данных исследований созданы новые препараты для лечения онкологических патологий печени и простаты. Под его руководством разрабатываются новые материалы на основе магнитных наночастиц для терапии и диагностики социально-значимых заболеваний, в первую очередь онкологических патологий печени, предстательной железы, головного мозга.

Александром Георгиевичем Мажугой опубликовано более 140 научных работ в высокорейтинговых научных журналах, включая ASC Nano, J.Org.Chem., Angewandte Chemie, Coordinational Chemical Reviews, Polyhedron, Tetrahedron и т.д. Количество цитирований статей в журналах по данным Web of Science: 1298, Scopus: 1335. Автор более 10 патентов, в том числе международных.

А.Г. Мажуга — член Американского химического общества, Международного общества бионеорганической химии, Российского химического общества им. Д.И.Менделеева.

Публикации

Synthesis and biological evaluation of novel dispiro-oxindoles with anticancer activity / M. E. Kukushkin, E. K. Beloglazkina, D. A. Skvortsov et al. // Bioorganic and Medicinal Chemistry.

Ti new organic ligands of the terpyridine series: Modification of gold nanoparticles, preparation of coordination compounds with cu(i), catalysis of oxidation reactions so chemistry of heterocyclic compounds / А. G. Majouga, R. B. Romashkina, A. S. Kashaev et al. // of 2,4-di-tert- butylphenol into 3,3', 5,5'-tetra(tert-butyl) biphenyl-2,2'-diol. TC 1 Z9 1 SN 0009-3122 UT WOS:000288797900006 ER.

Conjugates of prostate-specific membrane antigen ligands with antitumor drugs / A. A. Uspenskaya, A. É. Machulkin, A. G. Mazhuga, E. K. Beloglazkina // Pharmaceutical Chemistry Journal. — 2019. — Vol. 53, no. 4. — P. 288–297. [ DOI ]

Copper-promoted c-se cross-coupling of 2-selenohydantoins with arylboronic acids in an open flask / O. Vyhivskyi, E. A. Dlin, A. V. Finko et al. // ACS combinatorial science. — 2019. — Vol. 21, no. 6. — P. 456–464. [ DOI ]

Intravital microscopy reveals a novel mechanism of nanoparticles excretion in kidney / V. Naumenko, A. Nikitin, K. Kapitanova et al. // Journal of Controlled Release. — 2019. — P. 1–1. Developing nanocarriers that accumulate in targeted organs and are harmlessly eliminated still remains a big challenge. Nanoparticles (NP) biodistribution is governed by their size, composition, surface charge and coverage. The current thinking in bionanotechnology is that renal clearance is limited by glomerular basement membrane pore size (≈6 nm), although there is a growing evidence that NP exceeding the threshold can also be excreted with urine. Here we compare biodistribution of PEGylated 140 nm iron oxide cubes and clusters with a special focus on renal accumulation and excretion. Atomic emission spectroscopy, fluorescent microscopy and magnetic resonance imaging revealed rapid and transient accumulation of magnetic NP in kidney. Using intravital microscopy we tracked in real time NP translocation from peritubular capillaries to basal compartment of tubular cells and subsequent excretion to the lumen within 60 min after systemic administration. Transmission electron microscopy revealed persistence of intact full-sized NP in urine 2 hours post injection. The results suggest that translocation through peritubular endothelium to tubular epithelial cells is an alternative mechanism of renal clearance enabling excretion of NP above glomerular cut-off size. [ DOI ]

Top